隨著生物醫(yī)學研究對復雜組織結構和功能的深入探索,高分辨率、高信噪比的深組織成像技術變得愈加重要。傳統(tǒng)的顯微鏡技術往往局限于二維、透明的生物薄樣本的觀測,這在很大程度上無法滿足當前生物醫(yī)學領域對三維深組織體成像的研究需求。
光片熒光顯微鏡憑借其低光損傷、高采集速率、大視場、體成像等優(yōu)點被生物學家廣泛使用。然而,生物組織固有的高散射特性仍然為深層成像帶來了巨大的挑戰(zhàn)。
南京理工大學周笑團隊在《激光與光電子學進展》發(fā)表文章,重點介紹了光片熒光顯微成像技術在深組織成像領域的最新進展,特別是應對高散射樣本挑戰(zhàn)的解決策略,旨在為相關領域的研究人員提供有價值的參考,助力其對該前沿技術的最新進展和應用前景的理解。
光片熒光顯微鏡的基本原理與挑戰(zhàn)
1.基本原理
成像方式獨特:光片熒光顯微鏡采用照明與探測正交的方式進行三維圖像采集。激光從一側對樣品照明激發(fā),在與照明光路垂直的方向探測熒光。這種方式與傳統(tǒng)熒光顯微成像技術相比,只激發(fā)焦點處的熒光,有效減少了離焦熒光信號的干擾,從而降低了光漂白與光毒性,同時也減少了背景噪聲,極大地提升了成像質量。
光片形成及影響因素:
高散射樣本成像質量問題:在觀測如大腦或心臟的厚層切片和腫瘤組織等高散射生物樣本時,樣本內部復雜結構和光學異質性導致光片在樣品內產(chǎn)生嚴重的散射與吸收,進而引起圖像模糊或失真。光片熒光顯微鏡從側面一次照亮整個平面的照明方式,還會使采集的數(shù)據(jù)中存在條紋偽影,降低圖像質量,同時散射會減弱焦點處熒光信號,降低圖像對比度。
主要技術進展
1.激發(fā)光調制
無衍射光束應用:研究人員采用貝塞爾光束以及其他無衍射光束代替高斯光束。貝塞爾光束在傳播過程中能保持較小束腰尺寸,且具備“自我修復”特性,即使在高散射介質中也能保持較長的均勻光片,有效減少對組織內部成像時的畸變。
例如Planchon等采用掃描貝塞爾光束形成比高斯光束有效長度長3-5倍的光片。艾里光束能產(chǎn)生比相同數(shù)值孔徑的高斯或貝塞爾光束更薄的光片,雖然其不對稱激發(fā)模式可能導致圖像略顯模糊或扭曲,但通過反卷積算法處理可恢復細節(jié)。華中科技大學團隊提出的雙環(huán)調制選擇平面照明顯微鏡(IDDR-SPIM)和中國科學院西安光機所團隊提出的互補光束相減光片熒光顯微成像技術(CBS-LSFM)等進一步優(yōu)化了貝塞爾光束的應用,減少了圖像偽影,提高了軸向分辨率與信噪比。
近紅外激發(fā)光優(yōu)勢:較長波長的近紅外光具有更長的散射平均自由程,在生物組織中傳播時更不容易被介質中的小顆粒散射,從而實現(xiàn)更深的組織穿透。
例如Wang等利用近紅外二區(qū)光片顯微鏡對小鼠腦組織成像,1320nm激發(fā)光能夠在甘油清除的腦組織中進行較深和較寬的光學切片成像。目前已開發(fā)多種在近紅外二區(qū)發(fā)射的熒光探針,促進了其在心血管疾病、腦部病變和癌癥小鼠模型成像中的應用,但開發(fā)適用于該光學窗口的探針仍具挑戰(zhàn)性。
2.多視圖融合
多角度信息獲取及融合:多視圖融合技術通過同時獲取樣本不同視角或不同光路的成像信息,并利用融合算法對樣本進行三維重建,有效降低了散射的影響,提高了深組織成像的質量。
不同方法及應用案例:最原始的方法是旋轉樣本并從不同角度采集圖像,如Huisken等采用該方法實現(xiàn)了基因和蛋白質表達模式的高分辨率三維可視化。Ahrens等使用雙物鏡激發(fā)系統(tǒng)提供更均勻的照明平面,有效去除偽影,其軸向分辨率比單向選擇平面照明顯微鏡提高了2倍,且成像速度更快。
華中科技大學龔輝教授團隊利用雙光束照明和共焦雙縫檢測提高圖像信噪比和質量。為解決順序多視圖成像的時空偽影問題,研究人員開發(fā)了同步多視圖選擇平面照明顯微鏡(SiMView-SPIM)等技術,可實現(xiàn)幾乎完整的樣本覆蓋,成像速度大幅提高,還有其他如各向同性選擇平面照明顯微鏡(IsoView SPIM)、多視圖選擇平面照明顯微鏡(MuViSPIM)和四透鏡光片顯微鏡等技術也在一定程度上優(yōu)化了系統(tǒng)參數(shù),應用于胚胎發(fā)育等多個研究領域。
3.非線性光學
非線性光學效應原理及應用:非線性光學效應是在高光強條件下光與物質相互作用出現(xiàn)的非線性響應,如雙光子吸收(2PA)、二次諧波發(fā)生(SHG)和相干反斯托克斯拉曼散射(CARS),其中雙光子吸收在生物成像中應用最廣泛。雙光子顯微鏡基于雙光子吸收效應構建,其發(fā)光原理是“同時”吸收兩個光子形成一個分子進入激發(fā)態(tài),再回到基態(tài)釋放出熒光。這種非線性激發(fā)只激發(fā)焦點處熒光,顯著減弱了光的散射和吸收,相比于傳統(tǒng)的單光子寬場熒光顯微鏡,能夠實現(xiàn)更深的組織穿透和更精準的光學切片,通常采用紅外激發(fā)進一步增強組織穿透能力。
4.波前校正
自適應光學原理及應用:自適應光學最初用于天文望遠鏡,其核心原理是利用動態(tài)元件如可變形鏡或空間光調制器進行波前控制,校正成像系統(tǒng)產(chǎn)生的相位畸變,減少系統(tǒng)由光學元件及樣品本身引起的像差,從而優(yōu)化成像系統(tǒng)的性能。波前的校正可通過直接波前傳感技術或迭代的無傳感器方法實現(xiàn)。
在光學顯微鏡中,自適應光學已成為校正像差和恢復衍射極限分辨率的重要工具。應用于光片顯微鏡方面,Bourgenot等采用無波前傳感器的方法,在探測光路中加入可變形鏡對轉基因斑馬魚成像,極大提高了成像質量,特別是成像深度。Royer等提出基于AutoPilot框架的時空自適應成像方法,可從多個角度捕捉高分辨率生物樣本圖像,提高空間分辨率和信號強度。還有其他研究將晶格光片顯微鏡與自適應光學相結合,實現(xiàn)了亞細胞過程的無像差成像。
5.樣品處理
早期嘗試及局限:在生物學成像領域,早期研究人員嘗試通過調整物鏡浸沒介質的折射率來降低組織的散射,以增強光片的穿透能力,但這種方法在提高樣品透明度和穿透能力方面效果有限。
針對組織透明化過程中可能對某些蛋白質或結構造成破壞的問題,研究人員進一步開發(fā)了組織膨脹技術,該技術可在保持組織結構的同時均勻地將樣品物理放大,使原本低于光學顯微鏡分辨率的細節(jié)特征能夠可視化。例如Gao等將膨脹顯微鏡與超分辨率晶格光片顯微鏡結合,實現(xiàn)了小鼠和果蠅大腦的近納米級成像,西湖大學高亮教授團隊提出的多功能平鋪光片顯微鏡通過組織膨脹處理提高了分辨率。
深組織光片熒光顯微成像應用
1.發(fā)育生物學
實時活體成像優(yōu)勢:光片熒光顯微鏡因其低光毒性和光損傷特性,成為實時活體樣本成像的理想選擇,最初主要應用于發(fā)育生物學領域。
應用案例及成果:Keller等利用數(shù)字掃描光片顯微鏡實現(xiàn)了對斑馬魚胚胎發(fā)育初期細胞核定位和運動的亞細胞分辨率成像;Chhetri等開發(fā)的各向同性多視圖光片熒光顯微鏡實現(xiàn)了對果蠅原腸受精胚胎發(fā)育過程的多視圖反卷積成像;McDole等開發(fā)的自適應成像框架可對小鼠胚胎從原腸胚形成到早期器官發(fā)育的過程進行成像;Daetwyler等同時對多個斑馬魚胚胎樣品進行成像,為定量研究生物過程提供了基礎。這些方法有助于研究人員深入觀察胚胎發(fā)育及神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)展等復雜生物過程。
應用案例及成果:Ahrens等開發(fā)的同步多視圖光片顯微鏡記錄了斑馬魚大腦中幾乎所有神經(jīng)元單細胞分辨率成像;Xiao等采用晶格光片顯微鏡研究斑馬魚神經(jīng)損傷模型中細胞間的相互作用;Pan等開發(fā)的組織透明化溶液使器官和動物身體透明,結合光片顯微鏡對神經(jīng)和血管系統(tǒng)成像,可觀察單個神經(jīng)元和突觸的結構;de Medeiros等采用四物鏡光片顯微鏡結合短紅外激光脈沖實現(xiàn)了對斑馬魚亞細胞水平的神經(jīng)元成像。這些研究有助于深入了解神經(jīng)系統(tǒng)的結構和功能,以及實時監(jiān)測神經(jīng)活動。
3.組織病理學
活體組織檢查優(yōu)勢:光片顯微鏡提供了一種快速、無需切片、低光漂白、非破壞性的活體組織檢查方法,吸引了臨床病理學家的廣泛關注。
應用案例及成果:Glaser等開發(fā)的非破壞性開放式光片顯微鏡可實現(xiàn)橫向無約束成像,用于術中對新鮮人類前列腺組織和乳腺組織的病理成像;Migliori等開發(fā)的光片θ顯微鏡從檢測物鏡同一側均勻照亮樣品,對人腦厚冠狀板進行快速高分辨率定量成像;Glaser等進一步開發(fā)的多浸入的開放式光片顯微鏡可對組織透明化的標本進行便捷的高通量成像。光片熒光顯微成像技術可幫助病理學家更好地了解組織的生長和形態(tài)變化,提高診斷疾病和分期病變的能力。
結論與展望
光片熒光顯微成像技術憑借其獨特的照明和探測方式,具備低光損傷、高分辨率和快速三維體成像等特性,優(yōu)化了傳統(tǒng)顯微成像效果,成為生物醫(yī)學領域的重要工具。
面對生物樣本的多樣性與復雜性帶來的光散射與組織穿透能力的局限,研究人員通過多種技術優(yōu)化突破了這一難題,使其在深組織成像領域廣泛應用。
該技術不僅能揭示單個細胞的結構和功能,還能深入到細胞群體中觀察互動和通訊,為理解復雜生物過程提供新視角,預示著更多科研突破和醫(yī)學應用的可能性。
聲明:本文僅用作學術目的。文章來源于:周笑, 左超, 劉永燾. 深組織光片熒光顯微成像研究進展(特邀)[J]. 激光與光電子學進展, 2024, 61(2): 0211010. Xiao Zhou, Chao Zuo, Yongtao Liu. Advances in Deep-Tissue Light-Sheet Fluorescence Microscopic Imaging (Invited)[J]. Laser & Optoelectronics Progress, 2024, 61(2): 0211010.