一、簡(jiǎn)介 

在基于哺乳動(dòng)物細(xì)胞的研究中，酶標(biāo)儀主要應(yīng)用于: (1) 常規(guī)分子檢測(cè)，如核酸、蛋白濃度及酶活性分析等；(2) 信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)研究， 如一些細(xì)胞信號(hào)事件如 ROS，修飾的檢測(cè)；(3) 整體細(xì)胞水平的分析，如細(xì)胞的活力、凋亡和殺傷等。然而在植物領(lǐng)域中，酶標(biāo) 儀的應(yīng)用則偏向前兩個(gè)方向，此外，植物領(lǐng)域的酶標(biāo)儀應(yīng)用普遍度也不及動(dòng)物，但這并不限制酶標(biāo)儀在該領(lǐng)域的應(yīng)用前景。在此， 我們結(jié)合常見的應(yīng)用案例介紹酶標(biāo)儀在植物領(lǐng)域中的應(yīng)用，提升酶標(biāo)儀在植物研究中的應(yīng)用價(jià)值，并進(jìn)一步協(xié)助植物的科研發(fā)展。 

二、利用酶標(biāo)儀進(jìn)行常見的分子檢測(cè)和分析 

在植物領(lǐng)域中一些基礎(chǔ)的分子檢測(cè)，如基于紫外吸收或熒光的 DNA，RNA 和蛋白定量及純度分析等，都可以用酶標(biāo)儀進(jìn)行 高通量檢測(cè)。由于原理和應(yīng)用類型與研究哺乳動(dòng)物細(xì)胞類似，在此就不贅述了，大家有需求可參考我們針對(duì)核酸定量的應(yīng)用材料。 在此我們主要列植物領(lǐng)域中比較特色的幾個(gè)案例。 

2.1 吸收峰和熒光光譜分析 

植物領(lǐng)域中通常會(huì)涉及到對(duì)一些感興趣的化合物，如色素等的物理指標(biāo)分析，其中就包括吸收峰分析和針對(duì)具有熒光特質(zhì)的 化合物進(jìn)行熒光光譜分析。通常這些分析會(huì)由分光光度計(jì)完成，但會(huì)受到通量和曲線分析能力的限制�，F(xiàn)階段大部分 Molecular Devices 推出的配備光柵的酶標(biāo)儀如 M 系列和 iD 系列都支持出色的光譜掃描分析，包括全波長(zhǎng)光吸收和熒光光譜掃描，步進(jìn)可精 確至 1 nm，可應(yīng)對(duì)常見的光譜分析需求，并極大提高通量。同時(shí)配備的 SoftMax Pro 軟件可自動(dòng)分析光譜圖簡(jiǎn)化處理流程。

基于光譜掃描還可用于進(jìn)一步分析具有調(diào)節(jié)熒光能力的蛋白功能，如藍(lán)藻細(xì)菌中的 Orange Carotenoid Protein (OCP) 在強(qiáng) 藍(lán)-綠光下會(huì)和藻膽 ( 蛋白 ) 體 (PBS) 相互作用來保護(hù)細(xì)胞。實(shí)驗(yàn)中可觀察到 OCP 的引入可降低 PBS 的熒光發(fā)射強(qiáng)度。對(duì)于新發(fā)現(xiàn) 的 OCP 家族成員，我們就可以通過熒光光譜掃描功能確認(rèn)其是否會(huì)淬滅 PBS 的熒光 ( 圖一 )。結(jié)果發(fā)現(xiàn)相較于已知的 OCP1，新 發(fā)現(xiàn)的 OCP2 具有較弱的熒光淬滅能力 ( 圖一，來源于文獻(xiàn) Nat Plants. 2017 Jul 10;3:17089. )。

^{圖一 分析 OCP 的 PBS 熒光淬滅能力，黑色實(shí)線代表無強(qiáng)藍(lán)-綠光照射下 PBS 的熒光發(fā)射譜 ( 激發(fā) 580 nm )，黑色虛線代 表在強(qiáng)藍(lán)-綠光照射下 PBS 的熒光發(fā)射譜。藍(lán)色和紅色虛線分別代表在在強(qiáng)藍(lán)-綠光引入 OCP1 和 OCP2 。 圖片來源于文獻(xiàn)：Nat Plants. 2017 Jul 10;3:17089.。酶標(biāo)儀為 SpectraMax M2。}

2.2 酶活分析

在植物研究中，酶活分析也是常見的檢測(cè)之一，主要用于探究植物本身酶的功能和植物提取物對(duì)各種酶活性的影響�；�于底 物工作機(jī)制的不同，酶活可用光吸收法和熒光法檢測(cè)。例如圖二就展示了多種植物的提取物對(duì)參與血糖調(diào)控的 α-淀粉酶 (α-amylase) 和 α-葡萄糖苷酶 (α-glucosidase) 活力的抑制 ( 來源于文獻(xiàn)：J Agric Food Chem. 2012 Sep 12;60(36):8924-9.)。其中，α-淀粉酶 的活力檢測(cè)是基于使用自身淬滅的 DQ™ starch 熒光底物。隨著底物在酶的作用下發(fā)生降解，進(jìn)而發(fā)出熒光，并可通過熒光強(qiáng)度 的變化分析酶活。而 α-葡萄糖苷酶活性的檢測(cè)則基于其底物光吸收屬性在酶處理下的變化。

^{圖二 不同濃度植物提取物對(duì) α-淀粉酶 ( 左 ) 和 α-葡萄糖苷酶 ( 右 ) 活力的抑制。圖片來源于文獻(xiàn)：J Agric Food Chem. 2012 Sep 12;60(36):8924-9.。酶標(biāo)儀為 SpectraMax Gemini ( 熒光檢測(cè) ) 和 SpectraMax 190 ( 光吸收檢測(cè) )}

通常，酶活檢測(cè)基于動(dòng)力學(xué)檢測(cè)模式，同時(shí)需要進(jìn)行控溫。多數(shù) Molecular Devices 推出的酶標(biāo)儀均可完成酶活檢測(cè)。除此 之外，配備的 SoftMax Pro 軟件支持工作流，可進(jìn)行復(fù)雜的酶活設(shè)定和檢測(cè)，同時(shí)對(duì)動(dòng)力學(xué)的多種分析，如斜率，最高速度，曲 線下面積等，都可輕松用軟件批量分析。

2.3 DPPH 和 ORAC 分析

DPPH 和 ORAC 分析是抗氧化研究中常見的兩個(gè)檢測(cè)項(xiàng)目，常被用于分析植物和中藥提取物的抗氧化能力。其中 DPPH ( 1,1二苯基-2-三硝基苯肼 )自由基清除實(shí)驗(yàn)基于帶有自由基的 DPPH 和中和后的 DPPH 具有不同的光吸收屬性進(jìn)行分析待測(cè)物質(zhì)是否 具有自由基清除能力 ( 圖三 )。

^{圖三 DPPH 工作原理，圖片來源于網(wǎng)址：https://www.omicsonline.org/articles-images/2161-0444-4-517-g001.html}

因此，配備光吸收功能的酶標(biāo)儀就可用于檢測(cè) 517 nm 附近的吸收強(qiáng)度變化，進(jìn)而推測(cè)待測(cè)樣本的自由基清除能力。圖四展 示了不同的類胡蘿卜素的抗氧化能力比較 (Sci Rep. 2016 Feb 23;6:21987.)。

^{圖四 基于 DPPH 自由基清除實(shí)驗(yàn)比較不同類胡蘿卜素的抗氧化能力， 圖片來源于文獻(xiàn)：Sci Rep. 2016 Feb 23;6:21987.。酶標(biāo)儀為 SpectraMax Plus384。}

ORAC 實(shí)驗(yàn)則是檢測(cè)氧化自由基吸收能力 (Oxygen Radical Absorbance Capacity)，與 DPPH 不同，其基于熒光法。體系中 引入的自由基產(chǎn)生者 AAPH (2,2’-azobis (2-amidino-propane) dihydrochloride) 會(huì)破壞熒光探針，使熒光強(qiáng)度逐漸衰退。而引 入的具有抗氧化能力的待測(cè)樣本則會(huì)抑制熒光強(qiáng)度的衰退，進(jìn)而通過計(jì)算熒光動(dòng)態(tài)曲線的曲線下面積 (AUC) 的變化可分析待測(cè)化 合物的抗氧化能力 ( 圖五 )。一般，ORAC 實(shí)驗(yàn)中會(huì)用 Trolox 標(biāo)準(zhǔn)品作為校準(zhǔn)，獲得不同待測(cè)樣本的抗氧化指數(shù) ( 圖五， Molecules. 2013 Oct 17;18(10):12937-50. )。

^{圖五 利用 ORAC 實(shí)驗(yàn)分析不同草藥提取物的抗氧化能力。左圖為熒光動(dòng)力學(xué)曲線，可觀察到草藥提取物的引入增加 了熒光探針的信號(hào)壽命 ( 曲線下面積 )。右圖為參考 Trolox 結(jié)果得出抗氧化指數(shù)。圖片來源于文獻(xiàn)：Molecules. 2013 Oct 17;18(10):12937-50.。酶標(biāo)儀為 SpectraMax Gemini}

三、利用酶標(biāo)儀進(jìn)行植物信號(hào)分析

除了一些常見分子的分析和定量之外，常見的植物信號(hào)，如報(bào)告基因、蛋白蛋白相互作用和 ROS 分析等，也都可以用酶標(biāo)儀 進(jìn)行高通量的分析。

3.1 報(bào)告基因分析

基于 β-葡萄苷酸酶 (β-glucuronidase) 的 GUS報(bào)告基因系統(tǒng)利用了在高等植物中 β-glucuronidase 表達(dá)和活性很低，是常見 的研究植物基因功能和活力的分析方法�；�于不同的底物，GUS 報(bào)告基因可用多種方法學(xué)進(jìn)行檢測(cè)，包括組織染色法、光吸收法 和熒光法。在此主要介紹可用于熒光酶標(biāo)儀分析的熒光法，其主要基于底物 MUG (4-methylumbelliferyl b-D-glucuronide)，其 在 GUS 的作用下產(chǎn)生具有熒光的 4-MU (4-methylumbelliferone)，可以進(jìn)一步用熒光酶標(biāo)儀進(jìn)行分析。在進(jìn)行熒光法 GUS 報(bào)告 基因檢測(cè)時(shí)，通常需要 4-MU 標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行校準(zhǔn)，同時(shí) GUS 的活性還需要進(jìn)一步使用總蛋白量來校準(zhǔn)。此外，4-MU 本身容易降解， 因此使用時(shí)注意保護(hù)和有效期。

熒光法 GUS 報(bào)告基因系統(tǒng)在植物研究中的應(yīng)用方向很多，其中包括特定的基因啟動(dòng)子活力在激素處理和壓力情況下的變化 ( 圖六，J Exp Bot. 2005  Mar;56(413):909-20. ) 和特定基因的過表達(dá)是否會(huì)影響靶基因啟動(dòng)子活力 ( 圖七，Mol Plant. 2012 Sep;5 (5):1042-57. ) 等。 

^{圖六 利用 GUS 報(bào)告基因檢測(cè)不同激素 ( 上圖 ) 和壓力 ( 下圖 )情況下基因啟動(dòng)子活力的變化。白框表示對(duì)照組，灰 線代表處理組。圖片來源于文獻(xiàn)：J Exp Bot. 2005  Mar;56(413):909-20.。酶標(biāo)儀為 SpectraMax Gemini}

^{圖七 利用 GUS 報(bào)告基因檢測(cè) RAP2.11 過表達(dá)對(duì) AtHAK5 啟動(dòng)子活力的影響。 圖片來源于文獻(xiàn)：Mol Plant. 2012 Sep;5(5):1042-57.。酶標(biāo)儀為 SpectraMax Gemini}

3.2 蛋白蛋白相互作用分析

信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)研究中蛋白之間的相互作用 (Protein-Protein interaction，PPI) 分析是關(guān)鍵的一環(huán)，植物研究也不例外�，F(xiàn)階段， 研究植物體內(nèi)體外的PPI的方式有很多種，包括免疫共沉淀、FRET等。在這我們主要介紹利用酶標(biāo)儀的兩個(gè)方法：基于熒光的 bimolecular fluorescence complementation (BiFC) 和基于化學(xué)發(fā)光的 Split luciferase complementation assay (SLC)。

BIFC 是基于對(duì)熒光探針如 GFP、YFP 的 N,C 端拆分并分別和需研究的 PPI 成員克隆在一起。存在相互作用的情況下，探針的 N,C 端接近，具有熒光屬性 ( 圖八 )。此時(shí)就可用熒光酶標(biāo)儀高通量分析是否存在 PPI。BIFC 的優(yōu)勢(shì)是檢測(cè)體內(nèi)的PPI存在，同時(shí) 結(jié)合熒光顯微鏡還可分析PPI發(fā)生的位置 ( 圖九，Plant Cell. 2014 Mar;26(3):1345-59. )。

^{圖八 BIFC 原理，圖片來源于網(wǎng)址：https://commons.wikimedia.org/wiki/file:BiFC_(details).png}

^{圖九 BIFC 應(yīng)用案例，左圖為熒光顯微鏡分析結(jié)果，右圖為對(duì)應(yīng)的酶標(biāo)儀檢測(cè)結(jié)果 ( 36 份獨(dú)立樣本 )， 圖片來源于文獻(xiàn)：Plant Cell. 2014 Mar;26(3):1345-59. 酶標(biāo)儀為：SpectraMax M5}

SLC 則是基于敏感的化學(xué)發(fā)光反應(yīng)，原理和 BIFC 類似，不過不是拆分熒光探針，而是熒光素酶 ( luciferase，圖十，上 )。 PPI 發(fā)生時(shí)，熒光素酶的 N,C 端接近，此時(shí)結(jié)合引入的底物就可以進(jìn)行化學(xué)發(fā)光反應(yīng)，獲得的光信號(hào)就可以用酶標(biāo)儀分析( 圖十，中，下 (Plant J. 2007 Oct;52(1):185-95.；Mol Cell.2018 Feb 1;69(3):493-504.e6. )。由于是化學(xué)發(fā)光檢測(cè)，SLC 不受植物自發(fā)熒 光的干擾，同時(shí)也更為靈敏，缺點(diǎn)是無法直觀檢測(cè) PPI 發(fā)生位置。

^{圖十 上，SLC 原理，中，SLC 檢測(cè)流程，下，利用 SLC 檢測(cè)候選蛋白之間的相互作用，以及免疫系統(tǒng)的激活對(duì)相互 作用的影響。上圖和中圖來源于文獻(xiàn)：Plant J. 2007 Oct;52(1):185-95.。下圖來源于文獻(xiàn)：Mol Cell.2018 Feb 1;69 (3):493-504.e6. 酶標(biāo)儀為配備化學(xué)發(fā)光功能的 SpectraMax 系列}

3.3 ROS 分析

與氧化應(yīng)激密切相關(guān)的活性氧簇 (Reactive Oxygen Species，ROS) 在植物免疫信號(hào)通路中發(fā)揮著關(guān)鍵的作用，也是常規(guī)檢 測(cè)的信號(hào)事件之一。與哺乳動(dòng)物細(xì)胞的 ROS 水平檢測(cè)不同，植物 ROS 信號(hào)通常用基于化學(xué)發(fā)光的魯米諾 (Luminol) 法。Luminol 在氧化環(huán)境下 ( 如結(jié)合 H2O2 )，結(jié)合合適的催化物就會(huì)產(chǎn)光 ( 圖十一 )，因此可用于動(dòng)態(tài)追蹤 ROS 的水平，例如探究不同 表達(dá)條件下和突變情況下植物在鞭毛蛋白 flg22 刺激下的 ROS 反應(yīng)程度 ( 圖十二，Cell Host Microbe. 2014 Oct 8;16(4):48494. ；Mol Cell.2018 Feb 1;69(3):493-504.e6. )。

^{圖十一 Luminol 工作原理，圖片來源于網(wǎng)址：https://www.aimsci.com/ros/html/?page_id=285}

^{圖十二 左，利用 Luminol 法檢測(cè) avrB 的表達(dá)對(duì) Flg22 刺激的 ROS 水平的影響，圖片來源于：Cell Host Microbe. 2014 Oct 8;16 (4):484-94.，酶標(biāo)儀為 SpectraMax L。右，研究突變體對(duì) Flg22 刺激的 ROS 水平的影響，圖片來源于：Mol Cell.2018 Feb 1;69 (3):493-504.e6.，酶標(biāo)儀為具有化學(xué)發(fā)光檢測(cè)能力的 SpectraMax 系列。}

由于 Luminol 反應(yīng)為快速化學(xué)反應(yīng)體系，因此需要酶標(biāo)儀配備注射器系統(tǒng)，如 Molecular Devices 的 SpectraMax L， SpectraMax i3x 等 ( 圖十三 )。除了 luminol 法之外，結(jié)合試劑盒還可通過光吸收法和熒光法進(jìn)行植物組織的 H2O2 定量 ( 圖十四， Mol Plant. 2013 Mar;6(2):337-49. )。

^{圖十三 Luminol 法結(jié)果示意圖，數(shù)據(jù)基于配備注射器的 SpectraMax L，應(yīng)用快速動(dòng)力學(xué)模式，采樣間隔 1 秒。 圖片來源于文獻(xiàn)：Mol Plant. 2013 Mar;6(2):337-49.。酶標(biāo)儀為SpectraMax Gemini。}

^{圖十四 基于熒光法 H₂O₂ 定量，分析基因過表達(dá)對(duì) H₂O₂ 的影響。}

3.4 基于水母素 (Aequorin) 的鈣信號(hào)分析

在哺乳動(dòng)物和人類細(xì)胞中，鈣離子調(diào)控幾乎參與了所有核心的細(xì)胞信號(hào)事件和行為事件，其和磷酸化調(diào)控被譽(yù)為統(tǒng)治級(jí)別的 信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)方式。在植物中也不例外，鈣信號(hào)是核心的植物生長(zhǎng)和發(fā)育的調(diào)控者，參與了細(xì)胞分裂，激素的下游通路和應(yīng)激反應(yīng)等 等 (Plant Cell. 2005 Aug;17(8):2142-55.)。在哺乳動(dòng)物細(xì)胞研究中，鈣流通常是基于熒光探針法，然而，在植物中存在多種色素 和自發(fā)熒光物質(zhì)的干擾，因此相關(guān)研究會(huì)主要基于 Aequorin 法，其主要基于使用過表達(dá)的 Aequorin 蛋白。通過三個(gè)高親和力位 點(diǎn)結(jié)合鈣離子后，在氧的作用下 Aequorin 會(huì)不可逆催化 coelenterazine 發(fā)出藍(lán)光 ( 圖十五，Methods Mol Biol. 2013;1043:4554. )。該反應(yīng)屬于化學(xué)發(fā)光，可用支持對(duì)應(yīng)檢測(cè)模式的酶標(biāo)儀進(jìn)行分析。

^{圖十五 利用 Aequorin 檢測(cè)鈣流原理圖，圖片來源于文獻(xiàn)：Methods Mol Biol. 2013;1043:45-54.}

由于鈣離子流動(dòng)是快反應(yīng)，因此針對(duì)的檢測(cè)模式為化學(xué)發(fā)光快速動(dòng)力學(xué)檢測(cè)，因此儀器需有配備有注射器和化學(xué)發(fā)光檢測(cè)能 力，如Flexstation 3，SpectraMax i3x和SpectraMax L等 (圖十六)。

^{圖十六 上圖，Aequorin 法檢測(cè)植物鈣流結(jié)果示意圖，數(shù)據(jù)來源于配備注射器的 SpectraMax i3x。下圖，利 用 Aequorin 法檢測(cè)基因突變對(duì) glutamate 刺激的鈣流的影響，突變來源文獻(xiàn)：J Exp Bot. 2016 Mar;67 (6):1853-69.。酶標(biāo)儀為 Flexstation 3}

與常見的熒光法不同，Aequorin 本質(zhì)為化學(xué)發(fā)光法，因此避免了由激發(fā)光帶來的光損傷影響，同時(shí)也不受化合物自發(fā)熒光的影 響，具有更低的背景等優(yōu)勢(shì)。

四、利用酶標(biāo)儀進(jìn)行植物-微生物相互作用分析

在最后一章中，我們會(huì)涉及到植物整體水平的分析，主要關(guān)注近幾年興起的植物-微生物相互作用分析。我們會(huì)通過兩個(gè)案 例向大家介紹酶標(biāo)儀在這個(gè)方向的應(yīng)用。

第一個(gè)案例關(guān)注植物，如擬南芥與在植物根上常見的微生物如熒光假單胞菌之間的共生關(guān)系。為了確認(rèn)植物來源的變化是否 會(huì)影響共生微生物的適應(yīng)能力，科學(xué)家建立基于 24 孔板的高通量篩選系統(tǒng) ( Rhizosphere assay 圖十七，Nat Plants. 2015;1 (6). )。在體系中，通過水培將擬南芥種在 24 孔板中的漂浮網(wǎng)盤上，這樣只有根浸入培養(yǎng)基中。再引入標(biāo)記了 GFP 的細(xì)菌，就可 以使用酶標(biāo)儀進(jìn)行高通量的微生物增殖分析了( 圖十七 )。由于體系培養(yǎng)基中無碳，因此微生物的增殖需要依靠植物本身的光合產(chǎn) 物。

^{圖十七 上圖，Rhizosphere assay 示意圖。左邊放大圖可觀察擬南芥種于漂浮網(wǎng)盤上，右圖為引入微生物 P. fluorescens 7 天后的照片。 下圖，基于 Rhizosphere assay 篩選 196 株擬南芥的結(jié)果。圖片來源于文獻(xiàn)：Nat Plants. 2015;1(6).。酶標(biāo)儀為 SpectraMax M3。}

第二個(gè)案例同樣基于 GFP 蛋白的熒光檢測(cè)，但是基于檢測(cè)真菌對(duì)植物的侵染機(jī)制。一些真菌的效應(yīng)蛋白，如大豆疫霉菌的 Avr1b 蛋白可直接將 GFP 蛋白轉(zhuǎn)入至植物細(xì)胞中，這樣就可以通過酶標(biāo)儀分析靶細(xì)胞的熒光檢測(cè)霉菌的感染能力和進(jìn)一步機(jī)制研 究 ( 圖十八，Cell. 2010 Jul 23;142(2):284-95. )。在此，為了獲得更具有代表性的熒光信號(hào)，我們可使用 Molecular Devices 具有 孔掃描功能的酶標(biāo)儀進(jìn)行多點(diǎn)信號(hào)的采集和平均。

^{圖十八 基于熒光法動(dòng)態(tài)分析 A549 細(xì)胞對(duì)霉菌效應(yīng)蛋白的攝入。 圖片來源于文獻(xiàn)：Cell. 2010 Jul 23;142(2):284-95. 。酶標(biāo)儀為 SpectraMax Gemini。}

五、總結(jié)

上述的案例向我們展示了一些酶標(biāo)儀在植物領(lǐng)域常見的應(yīng)用方向。從常規(guī)的分子分析、酶活檢測(cè)到植物信號(hào)的研究等，都可 以應(yīng)用酶標(biāo)儀進(jìn)檢測(cè)和分析，在提高通量的同時(shí)簡(jiǎn)化實(shí)驗(yàn)的流程。

針對(duì)植物領(lǐng)域 Molecular Devices 提供了包括硬件和軟件的解決方案。對(duì)于常見的光吸收實(shí)驗(yàn)，如紫外法核酸蛋白定量和光 吸收酶活、ELISA 等，我們推薦配備比色皿端口的全波長(zhǎng)光吸收酶標(biāo)儀 SpectraMax Plus 384，其配備了 8 套檢測(cè)光路，適合于 高通量光吸收分析。針對(duì)熒光檢測(cè)，如報(bào)告基因和酶活，推薦靈敏的 SepctraMax Gemini 熒光酶標(biāo)儀。而針對(duì)化學(xué)發(fā)光檢測(cè)，如 報(bào)告基因，ROS 檢測(cè)，則推薦具有高達(dá)9個(gè)動(dòng)態(tài)檢測(cè)數(shù)量級(jí)的 SpectraMax L，其能配備注射器體系，適用于各種快/慢反應(yīng)的檢 測(cè)。除了單功能外，我們也有支持多個(gè)功能檢測(cè)的酶標(biāo)儀平臺(tái)，如經(jīng)典的M系列和新推出的 iD 系列可供選擇。

在軟件上，業(yè)內(nèi)領(lǐng)先的 SoftMax Pro 軟件可輕松應(yīng)對(duì)檢測(cè)過程中涉及的分析需求。對(duì)于常見的曲線擬合，SoftMax Pro 7 提 供了多達(dá) 21 中擬合選擇，并且擬合的方式全部可以自定義，因此可用于多種酶活分析等。對(duì)于動(dòng)力學(xué)檢測(cè)，SoftMax Pro 可自動(dòng) 按需求輸出斜率、AUC、最高速度等等。對(duì)于光譜掃描，SoftMax Pro 則可自動(dòng)導(dǎo)出最高吸收峰波長(zhǎng)等。只需點(diǎn)擊一次，數(shù)據(jù)采 集到分析到輸出就可一次完成。