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PCR反應(yīng)擴(kuò)增需要注意事項總結(jié)

瀏覽次數(shù):65 發(fā)布日期:2025-3-11  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
PCR是聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Polymerase Chain Reaction)的簡稱,是一種用于放大擴(kuò)增特定的DNA片段的分子生物學(xué)技術(shù)。以單鏈DNA為模板,4種dNTP為底物原料,在引物引導(dǎo)的情況下,模板與底物通過DNA聚合酶的聚合延伸,多次重復(fù)后使DNA呈指數(shù)擴(kuò)增復(fù)制。PCR反應(yīng)擴(kuò)增需要注意事項如下:
 

1. 引物的質(zhì)量是保證PCR特異性的關(guān)鍵,引物過長或過短均會使特異性降低,以18~30bp為宜;引物中C+G含量宜在50%左右;引物內(nèi)部和引物之間不應(yīng)含有互補(bǔ)序列;引物的堿基順序與非擴(kuò)增區(qū)域的同源性應(yīng)小于70%;引物的3’末端與模板DNA一定要配對,但末端沒有嚴(yán)格的限制,故引物設(shè)計時可在5’末端加上限制性內(nèi)切酶位點(diǎn)和/或啟動密碼ATG等;引物合成后必須純化以去除合成產(chǎn)物中的不完整序列、脫嘌呤產(chǎn)物、堿基修飾鏈等“雜質(zhì)”;引物的終濃度一般為0.2~0.5μmol/L,過低會影響反應(yīng)產(chǎn)量,過高會增加引物二聚或錯配的幾率。

2. Taq DNA聚合酶具有5’→3’聚合酶活性和5’→3’外切酶活性,但無3’-5’外切酶活性,因此對單核苷酸的錯配無校正功能,發(fā)生堿基錯配的幾率為 2.1×10-4左右。然而Taq DNA聚合酶的優(yōu)勢在于反應(yīng)產(chǎn)量高于其他DNA聚合酶。Stratagene推出的Pfu DNA聚合酶一直是研究人員心目中最好的高保真酶,而Pfu DNA聚合酶經(jīng)基因工程改造后,新創(chuàng)出的Pfu Ultra具有更佳的校驗活力。數(shù)據(jù)顯示Pfu UltraTM高保真DNA聚合酶的平均錯配率為Pfu DNA聚合酶的1/3,為Taq DNA聚合酶的1/18,是目前保真度最高的PCR酶(保真度=1/錯誤率) (數(shù)據(jù)來源:美國冷泉港實(shí)驗室)。

3. Mg2+濃度也是影響反應(yīng)效率和特異性的重要因素之一。Taq DNA聚合酶對Mg2+濃度非常敏感,Mg2+可與模板DNA、引物及dNTP等的磷酸根結(jié)合,不同反應(yīng)體系中應(yīng)適當(dāng)調(diào)整MgCl2的濃度,一般以比 dNTP總濃度高出0.5~1.0mmol/L為宜,Mg2+過量能增加非特異擴(kuò)增。
4. dNTP的濃度過高會增加堿基的錯誤摻入率,使反應(yīng)特異性下降;過低則會導(dǎo)致反應(yīng)速度下降。使用時4種dNTP必須以等當(dāng)量濃度配制,均衡的dNTP有利于減少錯配誤差和提高使用效率。

5. 溫度循環(huán)參數(shù)中應(yīng)特別注意復(fù)性溫度,它決定引物與模板的特異性結(jié)合。退火復(fù)性溫度可根據(jù)引物的長度,通過Tm=4(G+C)+2(A+T) 計算得到。在Tm允許的范圍內(nèi),選擇較高的退火溫度可大大減少引物與模板之間的非特異結(jié)合。

6. 減低污染的常規(guī)措施:
①將PCR試劑、PCR產(chǎn)物及其他分子生物學(xué)試劑分開放置;
②應(yīng)保持樣品制備、PCR反應(yīng)液配制與PCR產(chǎn)物分析三個工作區(qū)的獨(dú)立性;
③使用陽性和陰性對照;
④使用最高質(zhì)量的水配制PCR實(shí)驗的所有反應(yīng)試劑;
⑤配制好的PCR反應(yīng)試劑應(yīng)分成小包裝儲存,每個包裝僅用于單次實(shí)驗;
⑥制備樣品、配制試劑及反應(yīng)液時必須戴手套;
⑦實(shí)驗前一定要認(rèn)真清潔加樣器等。
發(fā)布者:上海邦景實(shí)業(yè)有限公司銷售部
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