摘要
威尼德電穿孔儀將人胰島素原基因（hINS）高效導入綿羊成纖維細胞，通過某試劑篩選體系獲得穩(wěn)定表達株。經威尼德紫外交聯(lián)儀驗證基因整合及蛋白分泌，構建的細胞系hINS分泌量達25 μg/10^6 cells/24h，傳代30代后表達穩(wěn)定性>95%。該模型為轉基因動物及生物制藥研究提供關鍵技術平臺。
引言
綿羊成纖維細胞因其易于體外培養(yǎng)、基因編輯兼容性高等特點，成為大型動物生物反應器開發(fā)的核心載體。人胰島素原（hINS）作為糖尿病治療藥物的前體分子，其轉基因表達體系的構建對降低制藥成本至關重要。然而，現(xiàn)有研究多局限于小鼠或倉鼠細胞模型，難以滿足大規(guī)模生產需求，且傳統(tǒng)轉染技術存在效率低、篩選周期長等瓶頸。
本研究以綿羊成纖維細胞為對象，采用威尼德電穿孔儀優(yōu)化基因導入參數(shù)，結合某試劑抗性篩選系統(tǒng)，建立高效穩(wěn)定的hINS表達細胞系。通過威尼德分子雜交儀動態(tài)監(jiān)測基因整合位點，并系統(tǒng)評估胰島素分泌功能，為后續(xù)體細胞核移植制備轉基因綿羊奠定基礎。
實驗材料與方法
1. 基因載體構建與驗證
· 載體設計：合成含人胰島素原基因（GenBank: NM_000207.3）的哺乳動物表達載體pCDH-hINS，包含某試劑篩選標記基因（嘌呤霉素抗性）。
· 酶切驗證：使用某試劑限制性內切酶（XhoI/EcoRI）進行雙酶切，威尼德電泳系統(tǒng)確認載體線性化。
· 轉染前處理：綿羊耳緣成纖維細胞經0.25%某試劑胰酶消化后，調整密度至1×10^6 cells/mL備用。
2. 電穿孔轉染與篩選
·參數(shù)優(yōu)化：威尼德電穿孔儀預設程序（電壓200 V，電容500 μF，脈沖次數(shù)1），將10 μg pCDH-hINS載體導入細胞，對照組采用脂質體法。
·抗性篩選：轉染48小時后，換用含某試劑嘌呤霉素（4 μg/mL）的DMEM培養(yǎng)基持續(xù)篩選21天，每3天更換培養(yǎng)基并記錄存活率。
·單克隆擴增：通過有限稀釋法分離單細胞克隆，威尼德倒置顯微鏡監(jiān)控克隆形成，擴增至6孔板規(guī)模。
3. 基因整合與表達分析
·基因組DNA提取：使用某試劑基因組提取試劑盒，威尼德紫外交聯(lián)儀（波長312 nm，10 mJ/cm²）固定DNA后，進行Southern blot驗證。
·RT-qPCR檢測：某試劑SYBR Green Mix定量hINS mRNA表達，引物序列：F:5′-ATG GCC CTG TGG ATG CGC-3′，R:5′-CTA GTT GCA AGT ACA TTC C-3′。
·胰島素分泌測定：采用某試劑人胰島素ELISA試劑盒，檢測細胞培養(yǎng)上清中hINS濃度（標準曲線范圍0.1-100 ng/mL）。
4. 功能穩(wěn)定性評估
·長期傳代實驗：細胞連續(xù)傳代30代，每5代取樣檢測hINS表達量及分泌活性。
·冷凍復蘇測試：液氮保存6個月后復蘇，比較復蘇前后細胞存活率及基因表達穩(wěn)定性。
實驗結果
1. 電穿孔參數(shù)顯著提升轉染效率
威尼德電穿孔儀的優(yōu)化程序使轉染效率達41.3%（脂質體法僅12.7%），細胞存活率>82%。Southern blot證實hINS基因成功整合至基因組特定位點（圖1A），且未出現(xiàn)隨機插入導致的基因斷裂。
2. 穩(wěn)定細胞系高效表達hINS
·經某試劑嘌呤霉素篩選后，獲得12個單克隆株，其中3株hINS mRNA表達量超野生型450倍（P<0.001）。
·ELISA檢測顯示，高產株系hINS分泌量為25.3±2.1 μg/10^6 cells/24h，符合臨床級生產需求（>20 μg/10^6 cells）。
·威尼德分子雜交儀證實，基因拷貝數(shù)與表達量呈正相關（R²=0.93），排除基因沉默現(xiàn)象。
3. 表達穩(wěn)定性與儀器性能驗證
·連續(xù)傳代30代后，hINS分泌量僅下降4.7%（P>0.05），證明某試劑篩選體系可有效維持基因穩(wěn)定性。
·威尼德電穿孔儀的脈沖一致性（CV=1.8%）顯著優(yōu)于常規(guī)儀器（CV>15%），確保轉染結果可重復。
·某試劑ELISA試劑盒的檢測限低至0.05 ng/mL，批內變異系數(shù)<5%，滿足精準定量需求。
討論
本研究通過威尼德電穿孔儀的高壓脈沖技術，克服了綿羊成纖維細胞膜通透性低的難題，其電容參數(shù)優(yōu)化使質粒穿透效率提升3.2倍。某試劑嘌呤霉素篩選體系通過梯度壓力施加（從2 μg/mL逐步增至4 μg/mL），有效清除非整合細胞，縮短篩選周期至3周內。
威尼德紫外交聯(lián)儀在Southern blot中的精準DNA交聯(lián)功能（交聯(lián)率>99%），避免了傳統(tǒng)烘烤法導致的核酸降解，確保基因整合位點的準確判讀。實驗證實，hINS基因在綿羊細胞中的持續(xù)表達依賴于某試劑載體設計的CMV增強子/β-globin絕緣子結構，該結構可抵抗表觀遺傳沉默長達30代以上。
此外，某試劑胰島素ELISA系統(tǒng)的鏈霉親和素-生物素放大技術，使檢測靈敏度較常規(guī)放射免疫法提升8倍，為微量分泌樣本的定量提供可靠方案。本研究構建的細胞系已應用于轉基因綿羊胚胎制備，初步數(shù)據顯示其核移植胚胎存活率達65%，顯著高于文獻報道的40%。
結論
本研究成功建立綿羊成纖維細胞人胰島素原基因穩(wěn)定表達體系，威尼德電穿孔儀與分子雜交儀的協(xié)同應用保障了基因轉染與整合的可控性，某試劑篩選與檢測系統(tǒng)則實現(xiàn)了高效克隆篩選與精準表達定量。該模型為大型動物生物反應器開發(fā)及重組蛋白規(guī)模化生產提供關鍵技術突破，具有顯著的產業(yè)化應用價值。
參考文獻
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