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新手須知的qPCR操作技巧詳解(下篇)

瀏覽次數(shù):4632 發(fā)布日期:2021-8-26  來(lái)源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

上一篇文章跟大家介紹了qPCR實(shí)驗(yàn)中引物設(shè)計(jì)及加樣的相關(guān)操作技巧,今天我們?cè)俑蠹曳窒砥渌膶?shí)用技巧,這些入門級(jí)知識(shí)一定要掌握牢固哦。
 

1、陰性對(duì)照的技巧:

陰性對(duì)照一般是指用水代替模板的反應(yīng)孔,體系中除了模板,包括了其他的反應(yīng)組分。由于qPCR的高靈敏性,陰性對(duì)照有出現(xiàn)擴(kuò)增信號(hào)的情況,那么在針對(duì)這類問(wèn)題時(shí),我們需要判斷其原因所在。
 

使用染料法進(jìn)行qPCR實(shí)驗(yàn)時(shí),首先查看陰性對(duì)照的溶解曲線主峰是否跟陽(yáng)性孔的主峰位置一致。如果一致,要看兩者Cq相差多少,比如,針對(duì)某一種引物的實(shí)驗(yàn)樣品Cq值為28. 5,陰性對(duì)照的Cq值為33. 6,由于Cq值相差大于5,如果按95%的擴(kuò)增效率計(jì)算,兩者模板量相差28倍之多,對(duì)分析數(shù)據(jù)影響不大,所以實(shí)驗(yàn)樣品的Cq值還是可以采用的;但是,如果兩者的Cq值僅相差 1~2,這說(shuō)明陰性對(duì)照中有較大的模板污染,則需要考慮更換試劑或引物,分區(qū)加樣,重新實(shí)驗(yàn)。如果不一致,陰性對(duì)照主峰對(duì)應(yīng)的Tm值小于陽(yáng)性孔的Tm值,則可能是引物性能不好,無(wú)模板或使用低濃度模板下會(huì)出現(xiàn)引物二聚體,這種情況則需要考慮更換引物,保證引物特異性以及擴(kuò)增效率。
 

▲ 圖1:溶解曲線主峰位置基本一致時(shí),S3是實(shí)驗(yàn)樣品,NTC是陰性對(duì)照,

兩者Cq相差大于5,實(shí)驗(yàn)樣品的Cq值還是可以采用的。
 

▲ 圖2:溶解曲線主峰位置不一致時(shí),STD-1是高濃度樣品,STD-5是中濃度樣品,

STD-8是低濃度樣品,NTC是陰性對(duì)照。隨著模板濃度降低逐漸出現(xiàn)引物二聚體,
導(dǎo)致擴(kuò)增效率測(cè)得不準(zhǔn)確。
 

使用TaqMan探針?lè)ㄟM(jìn)行qPCR實(shí)驗(yàn)時(shí),由于探針?lè)ǖ母咛禺愋,如果陰性?duì)照出現(xiàn)擴(kuò)增信號(hào),很大可能是模板污染或氣溶膠污染導(dǎo)致,操作時(shí)注意分區(qū)加樣,避免污染。
 

2、結(jié)果分析的技巧:

進(jìn)行相對(duì)定量分析時(shí),最常用到的是 2-ΔΔCq法,但是這種方法比較粗放,因?yàn)樗那疤崾羌俣ㄋ幸锏臄U(kuò)增效率都為100%。更為準(zhǔn)確的定量則需要考慮不同引物擴(kuò)增效率的差別?墒紫扔锰荻认♂尩哪0鍦y(cè)試各引物的擴(kuò)增效率E,獲得實(shí)際擴(kuò)增效率之后,后續(xù)實(shí)驗(yàn)只需要在軟件中直接輸入擴(kuò)增效率E值,即可計(jì)算更精準(zhǔn)的相對(duì)定量值。
 

在Azure Cielo™ 實(shí)時(shí)熒光定量PCR系統(tǒng)中可在分析界面輸入擴(kuò)增效率E值,完成更精準(zhǔn)的相對(duì)定量值的計(jì)算,如圖所示:
 


 

Azure Cielo™實(shí)時(shí)熒光定量PCR系統(tǒng)

Azure Cielo™實(shí)時(shí)熒光定量PCR系統(tǒng)來(lái)自于美國(guó)Azure Biosystems公司,配備高品質(zhì)溫度模塊,采用光纖和CMOS的檢測(cè)系統(tǒng),高能LED的激發(fā),提供高靈敏和可靠的數(shù)據(jù)。
 

熒光定量PCR

▲ Azure Cielo™實(shí)時(shí)熒光定量PCR系統(tǒng)

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